雖然利用人工接種之方式 CyMV 也可以感染 Chenopodium amaranticolor、Datura stramonium 及 Cassia occidentalis 形成局部病斑，但是其天然寄主仍以蘭科植物為主。

主要藉機械性傷口傳染，未發現有任何昆蟲可以媒介此病毒，蘭園中可經由病株汁液、工具、栽植過病株之盆缽、重複使用之植材、蘭株間之直接接觸，甚至灌溉水傳播此病毒。另外近年來蘭花種苗生產常用之分生組織培養，也是傳播此病毒之一項極普遍而有效之途徑。

利用觀察病徵方式進行 CyMV 之診斷，在少數被感染後可以穩定出現典型病徵之蘭花種類上是可行的，但對於大多數蘭種而言，被 CyMV 感染後所表現之病徵並不穩定，因此，只依據病徵診斷並不可靠。事實上蘭花感染病毒後常須一段時日才會表現病徵，此一病徵潛伏期之長短，隨蘭花種類及其生長狀態而有不同，有些蘭種甚至根本不出現病徵。若仰賴病徵之表現作為判別感染之唯一依據，則與事實會有相當之出入。延遲或錯誤之診斷常會導致病毒之擴大流行，故應配合其他更敏感之方法進行診斷方為上策。過去曾經被應用於 CyMV 診斷之方法包括：

電子顯微鏡觀察法：
此乃以觀察病株有否CyMV之典型病毒顆粒作為判別之依據。另外配合專一性抗體之應用 (如 Immuno-specific electron microscopy, ISEM) 也能提升電顯觀察之敏感度。

光學顯微鏡觀察法：
此乃根據 Christie and Edwardson (1977) 所發展之技術，利用染色法觀察病毒於寄主細胞內所形成之內含體 (inclusion body) ，根據報告 CyMV 於寄主細胞質中產生帶狀內含體 (banded body)，作為判別之依據。

抗血清檢定法：
此乃目前各種檢查法中應用最普遍的一種。常用之血清檢定法包括免疫擴散法 (SDS-immunodiffusion test)、酵聯抗體法 (ELISA) 及免疫點漬法 (immunoblotting test) 等三種。

核酸檢查法：
以病毒核酸為檢測對象，常用方法包括核酸探針雜配法 (DNA  probe hybridization)，及晚近生物技術上所廣泛應用之聚合酵素連鎖反應 (polymerase chain reaction, 簡稱 PCR) 均可適用於 CyMV 之檢定。

ORSV屬煙草嵌紋病毒屬 (Tobamovirus)。過去部份文獻認為 ORSV 應為煙草嵌紋病毒 (Tobacco mosaic virus, TMV) 之蘭花系統 (TMV-O)，但也有相當多之學者證實 ORSV 為獨立之 Tobamovirus 而非屬於 TMV 之一系統 (Edwardson and Zettler, 1988)。最近日本學者 Isomura 等更提出核酸序列分析之證據，支持 ORSV 乃異於TMV之獨立病毒。不過至今學界仍無法排除確有不同於 ORSV 之 TMV 系統可以感染蘭花之可能，此有待來日學者之繼續努力方能闡明。不過 ORSV 為異於TMV之一種發生於蘭花上最普遍之 Tobamovirus 應屬學界目前普遍認同之事實。

ORSV 最早是由 Jensen & Gold 於 1951 年在美國 Odontoglossum grande 上所發現。其後有關之報導持續不斷，目前與 CyMV 並列為蘭花上發生最普遍之病毒。據判斷其分佈應已遍及全世界各地商業生產之蘭園。

自然界寄主以蘭科植物為主，至少有 20 種蘭屬被證實可以被 ORSV 感染。可經由人工接種方式受感染之寄主包括Chenopodium amaranticolor、C. quinoa、Zinnia elegans、Nicotiana benthamiana、N. glutinosa、N. tabacum cv. Samsum、N. tabacum cv. Xanthi-nc、N. clevelandii、Cassia occidentalis、Tetragonia expensa、 Gomphrena globosa 及 Beta vulgaris 等。

ORSV 之病毒形態為典型 Tobamovirus 之直硬桿狀顆粒，長度 300nm，寬度 18nm，顆粒中軸可清楚分辨有溝狀構造。

ORSV 已知的之理化性質包括：活體外 (in vitro) 耐熱度 90-95℃；耐稀釋性達 10-7 以上；耐保存性最長之記錄超過 10 年以上 (Inouye, 1983)；RNA含量 5%。鞘蛋白單位分子量 17,598 Da；純化顆粒之最高吸光值位於 268 nm，最低值位於 248 nm；正常形態之病毒顆粒沉降係數為 212 S，吸光度 260/280 比值 0.99；buoyant density in CsCl 為 1.25 g cm-3。

根據病徵表現進行 ORSV 之診斷是蘭園中最普遍使用之方法，但其正確性常因蘭花品種對病毒感受性之差異或處於潛伏期而受影響，故其診斷與 CyMV 相同，應配合其他較敏感方法為佳。可應用於 ORSV 診斷之方法包括指示植物接種法；最常用之 ORSV 指示植物有 Gomphrena globosa、Nicotiana tabacum cv. Samsum 及 N. benthamiana 等。不過影響人工接種結果的因素很多，操作者必須具備豐富經驗，否則導致誤診之機會很大，而且由於時效之限制，無法處理大量樣品也是應用此一診斷方式之限制。其次應用電子顯微鏡檢查病株是否有 ORSV 之典型短桿狀顆粒，亦為常用可行之方法，若再配合 ORSV 抗體之應用，可進一步提升電顯觀察之敏感度。另外近年來所發展之光學顯微鏡檢查法，可依據 ORSV 於寄主細胞質內所形成之特殊圓盤形或紡錘形結晶狀內含體 (crystalline inclusion) 作為判別之依據。事實上近年來應用在 ORSV 之診斷上最普遍之方法是抗血清檢定法，特別是酵聯抗體法 (ELISA) 及免疫點漬法 ( immunoblotting test ) 最為產業界所接受。此外90年代逐漸廣為應用之核酸檢查法，如核酸探針雜配法 (DNA probe hybridization) 及聚合酵素連鎖反應(PCR)，亦已被發展成為例行之 ORSV 診斷方法。此類方法雖較抗血清法敏感，但技術門檻及經濟成本也相對較高，全面取代較為便捷之抗血清法在現階段仍不可能，但可應用於少量珍貴種源之病毒篩檢工作上。三、發生生態ORSV 之發生生態與前述 CyMV 相同，唯 ORSV 之生體外性質較 CyMV 穩定，可於污染之器具或植材上存活更久之時間，因此防治上比對付 CyMV 更為棘手，已發生 ORSV 之蘭園應更加注意避免病毒蔓延。

病毒形態為球形多面體，直徑 28-30 nm。顆粒體對中性氯鹽 (neutral chloride salts) 及陰離子界面活性劑 (anionic detergents) 頗為敏感，經處理後極易崩解。

CMV 可藉汁液傳染，亦可由蚜蟲以非永續方式 (non-persistent) 傳播，可傳播 CMV 之蚜蟲種類超過 60 種以上。CMV 不會經由蘭花種子帶毒傳播，但至少有 19 種植物感染後種子有傳播 CMV 現象。

CMV 之病毒顆粒乃由 180 個分子量為 24-26 kDa 之基本單位鞘蛋白 (subunit capsid protein) 包被單鏈型核糖核酸 (single stranded RNA)所組成，RNA含量為18%，病毒顆粒之沉降係數為 100 S，buoyant density in CsCl 為 1.37 gcm-3，Mr 為 6×106。CMV 之核酸乃由三條基因體 (RNA 1-3)及一條次基因體 (subgenomic RNA 4) 具轉譯訊息之線性單鏈型核糖核酸所組成，RNA 1 (3.41 kb) 及RNA 2 (3.06 kb)乃分別包被於不同病毒顆粒內，而 RNA 3 (2.19 kb) 及 RNA 4 (1.03 kb) 則共同包被於第三種顆粒內。 A260/280 約為1.7，Extinction coefficient (at 260 nm) 為 5.0。CMV 之生體外耐熱度為 70℃。

CMV 感染蝴蝶蘭及石斛蘭所造成之黃化條斑型病徵與 CyMV 者頗為類似，因此僅根據病徵作為 CMV 之診斷依據並不可靠。較理想之 CMV 診斷方法乃應用抗血清之免疫檢定法，包括 ELISA，SDS- immuno     diffusion test 均可適用。另外近年來所發展之 RT-PCR 及核酸探針雜配法亦可應用於 CMV 之檢測。